切换至 "中华医学电子期刊资源库"
高级检索
中华临床实验室管理电子杂志

中华临床实验室管理电子杂志 ›› 2017, Vol. 05 ›› Issue (01) : 36 -45. doi: 10.3877/cma.j.issn.2095-5820.2017.01.009

所属专题： 文献；

质量控制

浅谈生物样本的质量保证与质量控制
郭丹1, 王安琪2, 孙健3, 徐英春4,†()   
  1. 1. 100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院生物标本中心；100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院中心实验室
    2. 100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院生物标本中心
    3. 100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院生物标本中心；100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院病理科
    4. 100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院生物标本中心；100730　中国医学科学院　北京协和医学院　北京协和医院检验科
  • 收稿日期:2017-01-25 出版日期:2017-02-28
  • 通信作者: 徐英春
  • 基金资助:
    国家十二五重大专项子课题资助项目(2011ZX09307-001-01); 国家重点研发计划项目(2016YFC1201703)

Quality assurance and quality control of biospecimen

Dan Guo1, Anqi Wang2, Jian Sun3, Yingchun Xu4,†()   

  1. 1. Clinical Biobank, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China; Core Laboratory, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China
    2. Clinical Biobank, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China
    3. Clinical Biobank, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China; Department of Pathology, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China
    4. Clinical Biobank, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China; Department of Laboratory Medicine, Peking Union Medical College Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100730, China
  • Received:2017-01-25 Published:2017-02-28
  • Corresponding author: Yingchun Xu
  • About author:
    Corresponding author: Xu Yingchun, Email:
全文 ( ) 下载PDF ( ) 导出引用
引用本文：

郭丹, 王安琪, 孙健, 徐英春. 浅谈生物样本的质量保证与质量控制[J]. 中华临床实验室管理电子杂志, 2017, 05(01): 36-45.

Dan Guo, Anqi Wang, Jian Sun, Yingchun Xu. Quality assurance and quality control of biospecimen[J]. Chinese Journal of Clinical Laboratory Management(Electronic Edition), 2017, 05(01): 36-45.

随着转化医学的快速发展，临床生物样本库的建设和应用得到日益发展与重视，而生物样本的质量保证和质量控制是样本库建设的核心目标。影响生物样本质量的主要因素可分为分析前和分析中两大因素，涉及捐赠者的生物学和环境因素、样本的采集、处理、运输、储存、分发、分析等各环节。这些环节同时与人员、仪器、材料、方法、环境等要素相互作用共同影响着生物样本的质量。因此，单一因素控制和质量分析是无法保证高质量的样本以及相应的产出和临床转化应用，需要通过建立完善的质量管理体系给予多因素、全流程控制，并在生物样本库领域建立国际标准化的认证和认可，才能促进生物样本质量和研究水平快速提升，为疾病标志物检测、个体化医疗、药物研发等转化医学研究提供支持。

关键词: 临床生物样本库, 质量控制, 质量保证, 转化医学

With the fast growth and increasing demands for translational research, collection of clinical research resources in biobanks around the world has brought us a big concern about sample quality and its usability. Quality assurance(QA) and quality control (QC) of biospecimen are the key factors of biobank quality and usability. The main factors influencing the quality of biospecimen are pre-analytical and analytical variables, including the donor′s biological and environmental factors, biospecimen collection, processing, transportation, storage, distribution, analysis and so on. Those factors such as personnel, equipment, material, method and environment, which could interact with pre-analytical and analytical variables, directly influence the quality of biospecimen, so it is difficult to guarantee quality samples in clinical translational research if only single factor is applied to sample quality management. We should develop a quality management system specific to quality control of biobank. The goal is to gradually develop international standardization and accreditation. Taking together, it would facilitate quality samples for quality research as clinical research resources in term of biomarker and drug discovery for both translational and personal medicine.

Key words: Clinical bio-bank, Quality control, Quality assurance, Translational medicine
表1 影响血液、组织样本的分析前和分析中变量
分析前变量 分析中变量
生物变量 环境变量 血液样本采集 组织样本采集 血液样本处理 组织样本处理 样本存储 样本运输 样本前处理
年龄 季节更替 采集时间点 采集时间点 离心温度 延迟处理时间 时间 时间 分析方法
性别 气温 采集方式 麻醉方式 离心力 冷冻效率 方式 方式 分析试剂
种族 湿度 采集姿势 麻醉持续时间 离心时间 样本大小 温度 温度 仪器
生理周期 地理位置 采集顺序 动脉夹闭时间 延迟处理时间 固定剂种类 冻融次数 路程远近 人员操作
怀孕/哺乳 海拔高度 麻醉方式 热缺血时间 样本状态 固定方式 样本浓度 样本包装 ?
饮食/生活方式 日照强度 麻醉持续时间 冷缺血时间 ? 固定时间 ? 安全性 ?
疾病/药物治疗 ? 抗凝剂种类 手术方式 ? 固定温度 ? ? ?
吸烟/饮酒 ? ? ? ? 固定及时性 ? ? ?
锻炼 ? ? ? ? ? ? ? ?
体态 ? ? ? ? ? ? ? ?
昼夜节律变化 ? ? ? ? ? ? ? ?
表2 血液采集管分类与使用建议
抗凝剂种类 适合分析 不适合分析
无/二氧化硅/凝血酶 大多数生化分析、激素分析代谢组学研究[8] ?
EDTA 多数DNA和蛋白分析[8,11]、游离核酸[9]、外泌体[9]、血液学分析[8] PCR分析[11]、金属离子测定[8,11]、细胞遗传学分析[8]
枸橼酸盐 RNA/DNA分析[8,11]、红细胞沉降率、凝血因子/血小板分析[8,11]、淋巴细胞活性分析[8,11] ?
肝素 激素分析[9]、肾功能测定[9]、肝脏酶学检测[9]、代谢组学研究[8] PCR分析[8,11,14]、DNA提取[14]
氟化钠 血糖[9] ?
表3 体液样本标准化分析前代码（SPREC）[24]
样本类型 原始采样管 离心延迟时间 第一次离心 第二次离心 离心后时间 长期存储
AMN 羊水 ACD 枸橼酸葡萄糖 A 常温 <2 h A 常温 10 min <3000g 无制动 A 常温 10 min <3000g 无制动 A 3~7℃ <1 h A 0.5~2 ml的PP管 -85 ~ -60℃
ASC 腹水 CPD 枸橼酸盐磷酸盐右旋糖 B 3~7℃ <2 h B 常温 10 min <3000g 制动 B 常温 10 min <3000g 制动 B 常温 <1 h B 0.5~2 ml的PP管 -35 ~ -18℃
BAL 支气管肺泡灌洗物 HEP 肝素锂 C 常温 2~4 h C 3~7℃ 10 min <3000g 无制动 C 3~7℃ 10 min <3000g 无制动 C 3~7℃ 1~2 h C 1~2 ml冻存管 液氮
BLD 全血 HIR 水蛭素 D 3~7℃ 2~4 h D 3~7℃ 10 min <3000g 制动 D 3~7℃ 10 min <3000g 制动 D 常温 1~2 h D 1~2 ml冻存管 -85 ~ -60℃
BMA 骨髓 ORG Oragene或类似采集容器 E 常温 4~8 h E 常温 10 min 3000~6000g 制动 E 常温 10 min 3000~6000g 制动 E 3~7℃ 2~8 h E 1~2 ml冻存管 程序冷冻到-135℃以下
BMK 母乳 PAX 血液RNA F 3~7℃ 4~8 h F 3~7℃ 10 min 3000~6000g 制动 F 3~7℃ 10 min 3000~6000g 制动 F 常温 2~8 h F 麦管 液氮
BUC 口腔细胞 PED 乙二胺四乙酸钾（依地酸钾） G 常温 8~12 h G 常温 10 min 6000~10 000g 制动 G 常温 10 min 6000~10 000g 制动 G 3~7℃ 8~24 h G 麦管 -85 ~ -60℃
BUF 活性非聚蔗糖离心棕黄层 PIX 蛋白酶抑制剂 H 3~7℃ 8~12h H 3~7℃ 10 min 6000~10 000g 制动 H 3~7℃ 10 min 6000~10 000g 制动 H 常温 8~24 h H 麦管 -35 ~ -18℃
CEL Ficoll液分离的活性单核细胞 PI1 S8820蛋白酶抑制剂或等价物 I 常温 12~24 h I 常温 10 min >10 000g 制动 I 常温 10 min >10 000g 制动 I 3~7℃ >24 h I 麦管 程序冷冻到-135℃以下
CEN 非血液新鲜细胞 PPS 聚丙烯无菌管 J 3~7℃ 12~24 h J 3~7℃ 10 min >10 000g 制动 J 3~7℃ 10 min >10 000g 制动 J 常温 >24 h J ≥5 ml的PP管 -85 ~ -60℃
CLN 非血液活性细胞 PXD 血液DNA K 常温 24~48 h N 无离心 无离心 无离心 无离心 N 无离心 无离心 无离心 无离心 X 未知 未知 K ≥5 ml的PP管 -35 ~ -18℃
CRD 脐带血 PXR 骨髓RNA L 3~7℃ 24~48 h X 未知 未知 未知 未知 X 未知 未知 未知 未知 Z 其他 其他 L 微孔板 -85 ~ -60℃
CSF 脑脊液 SCI 枸橼酸钠 M 常温 >48 h Z 其他 其他 其他 其他 Z 其他 其他 其他 其他 ? ? ? M 微孔板 -35 ~ -18℃
NAS 鼻腔清洗物 SED 乙二胺四乙酸钠（依地酸钠） N 3~7℃ >48 h ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? P 石蜡包埋 室温
PEL Ficoll液分离的无活性单个核细胞 SPO 氟化钠/草酸钾 O 35~38℃ <2 h ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? X 未知 未知
PEN 非血液无活性细胞 SST 促凝血清分离管 X 未知 未知 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? Z 其他 其他
PFL 胸水 TEM Tempus管 Z 其他 其他 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
PL1 单次离心血浆 TRC 微量元素管 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
PL2 二次离心血浆 XXX 未知 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
SAL 唾液 ZZZ 其他 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
SEM 精液 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
SER 血清 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
SPT 唾液 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
STL 大便 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
SYN 关节滑膜液 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
TER 泪液 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
U24 24h尿 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
URN 尿液 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
ZZZ 其他 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?
表4 固体样本标准化分析前代码(SPREC)[24]
样本类型 采集类型 热缺血时间 冷缺血时间 固定剂类型 固定时间 长期存储
CEN 来自非血液标本的新鲜细胞 A06 死后6 h内尸检 A <2 min A <2 min ACA 含乙酸的非乙醛固定剂 A <15 min A 0.5~2 ml的PP管 -85~ -60℃
CLN 有活性的来自非血液标本的细胞 A12 死后6~12 h尸检 B 2~10 min B 2~10 min ALD 乙醛固定 B 15 min~1 h B 0.5~2 ml的PP管 -35 ~ -18℃
FNA 细针穿刺细胞 A24 死后12~24 h尸检 C 10~20 min C 10~20 min ETH 乙醇固定 C 1~4 h C 1~2 ml冻存管 液氮
HAR 毛发 A48 死后24~48 h尸检 D 20~30 min D 20~30 min FOR 非缓冲福尔马林 D 4~8 h D 1~2 ml冻存管 -85 ~ -60℃
LCM 激光捕获显微切割组织细胞 A72 死后48~72 h尸检 E 30~60 min E 30~60 min SNP 冷冻 E 8~24 h E 1~2 ml冻存管 程序冷冻到-135℃以下
PEN 无活性的来自非血液标本的细胞 BPS 活检 F >60 min F >60 min NAA 不含乙酸的非乙醛固定剂 F 24~48 h F 麦管 液氮
TIS 实体组织 FNA 细针穿刺抽吸物 N 不适用 N 不适用 NBF 中性福尔马林 G 48~72 h G 麦管 -85 ~ -60℃
LCM 无活性断裂组织 PUN 穿刺 X 未知 X 未知 OCT OCT X 未知 H 麦管 -35 ~ -18℃
ZZZ 其他 SRG 外科切除物 Z 其他 Z 其他 RNL RNA Later Z 其他 I 麦管 程序冷冻到-135℃以下
? ? SWB 拭子 ? ? ? ? XXX 未知 ? ? J ≥5 ml的PP管 -85 ~ -60℃
? ? ZZZ 其他 ? ? ? ? ZZZ 其他 ? ? K ≥5 ml的PP管 -35 ~ -18℃
? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? L 微孔板 -85 ~ -60℃
? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? M 微孔板 -35 ~ -18℃
? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? P 石蜡包埋 室温
? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? X 未知 未知
? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? Z 其他 其他
图1 样本生命周期全流程质量控制图
1
Watson PH, Wilson-McManus JE, Barnes RO, et al. Evolutionary concepts in biobanking- the BC BioLibrary[J]. J Transl Med, 2009,12(7):95.
2
Ginsburg GS, Burke TW, Febbo P. Centralized biorepositories for genetic and genomic research[J]. JAMA, 2008,299(11):1359-1361.
3
Baker M. Biorepositories: Building better biobanks[J]. Nature, 2012,486 (7401):141-146.
4
Kim SJ, Dix DJ, Thompson KE, et al. Effects of storage, RNA ex-traction, genechip type, and donor sex on gene expression profiling of human whole blood[J]. Clin Chem, 2007,53(6):1038- 1045.
5
Becker N, Lockwood CM. Pre-analytical variables in miRNA analysis[J]. Clin Biochem, 2013,46 (10-11):861-868.
6
Radom-Aizik S, Zaldivar F Jr, Leu SY, et al. Effects of exercise on microRNA expression in young males peripheral blood mononuclearcells[J]. Clin Transl Sci, 2012,5(1):32-38.
7
Ellervik C, Vaught J. Preanalytical variables affecting the integrity of human biospecimens in biobanking[J]. Clin Chem, 2015,61(7):914-934.
8
Elliott P, Peakman TC; UK Biobank. The UK Biobank sample handling and storage protocol for the collection, processing andarchiving of human blood and urine[J]. Int J Epidemiol, 2008,37(2): 234-244.
9
CLSI. Procedures for the handling and processing of blood specimens for common laboratory tests: approved guideline (H18-A4) [S]. 4th ed. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2010.
10
Lewis JM, Heineck DP, Heller MJ. Detecting cancer biomarkers in blood: challenges for new molecular diagnostic and point-of-care tests using cell-free nucleic acids[J]. Expert Rev Mol Diagn, 2015,15(9):1187-1200.
11
Vaught JB. Blood collection, shipment, processing, and storage[J]. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 2006,15(9):1582-1584.
12
Catchpoole D, DeFazio A, Devereux L, et al. Australasian Biospecimen Network (ABN) Guidelines for Biorepository Protocols[S]. Australasian: Australasian Biospecimen Network executive committee, 2007.
13
Shabihkhani M, Lucey GM, Wei B, et al. The procurement, storage, and quality assurance of frozen blood and tissue biospecimensin pathology, biorepository, and biobank settings[J]. Clin Biochem, 2014,47(4-5):258-266.
14
Yokota M, Tatsumi N, Nathalang O, et al. Effects of Heparin on polymerase chain reaction for white blood cells[J]. J Clin Lab Anal, 1999,13(3):133-140.
15
Liu A, Pollard K. Biobanking for Personalized Medicine[J]. Adv Exp Med Biol, 2015,864:55-68.
16
CLSI. Procedures for the collection of diagnostic blood specimens by venipuncture; approved standard (H3-A6) [S]. 6th ed. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2007.
17
Lippi G, Salvagno GL, Lima-Oliveira G, et al. Postural change during venous blood collection is a major source of bias in clinical chemistry testing[J]. Clin Chim Acta, 2014,440:164-168.
18
Kahn N, Riedlinger J, Roeßler M, et al, Blood-sampling collection prior to surgery may have a significant influence upon biomarker concentrations measured[J]. Clin Proteom, 2015,12(1):19.
19
Guerrera F, Tabbò F, Bessone L, et al. The Influence of Tissue Ischemia Time on RNA Integrity and Pa tient-Derived Xenografts (PDX) Engraftment Ratein a Non-Small Cell Lung Cancer (NSCLC) Biobank[J]. PLoS One, 2016,11(1):e0145100.
20
Lange N, Unger FT, Schöppler M, et al. Identification and Validation of a Potential Marker of Tissue Quality Using Gene Expression Analysis of Human Colorectal Tissue.[J]. PLoS One, 2015,10(7):e0133987.
21
Zhou JH, Sahin AA, Myers JN. Biobanking in genomic medicine[J]. Arch Pathol Lab Med, 2015,139(6):812-818.
22
Galissier T, Schneider C, Nasri S, et al. Biobanking of fresh-frozen human adenocarcinomatous and normal colon tissues: which parameters influence RNA quality[J]. PLoS One, 2016,11(4): e0154326.
23
Olsen J, Kirkeby LT, Eiholm S, et al. Impact of in vivo ischemic time on RNA quality- experiences from a colon cancer biobank[J]. Biopreserv Biobank, 2015,13(4):255-262.
24
Betsou F, Lehmann S, Ashton G, et al. Standard preanalytical coding for biospecimens: defining the sample PREanalytical code[J]. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 2010,19(4):1004-1011.
25
Yin P, Peter A, Franken H, et al. Preanalytical aspects and sample quality assessment in metabolomics studies of hyuman blood[J]. Clin Chem, 2013,59(5): 833-845.
26
Lippi G, Salvagno GL, Lima-Oliveira G, et al. Postural change during venous blood collection is a major source of bias in clinical chemistry testing[J]. Clin Chim Acta, 2014,440:164-168.
27
Tuck MK, Chan DW, Chia D, et al. Standard operating procedures for serum and plasma collection: early detection research network consensus statement standard operating procedure integration working group[J]. J Proteome Res, 2009,8(1):113-117.
28
Stiekema J, Cats A, Boot H，et al. Biobanking of fresh-frozen endoscopic biopsy specimens from esophageal adenocarcinoma[J]. Dis Esophagus, 2016,29(8):1100-1106.
29
Vaught J. Biobanking comes of age: the transition to biospecimen science[J]. Annu Rev Pharmacol Toxicol, 2016,56:211-228.
30
Hewitt SM, Lewis FA, Cao Y, et al. Tissue handling and specimen preparation in surgical pathology: issues concerning the recovery of nucleic acids from formalin-fixed, paraffin-embedded tissue[J]. Arch Pathol Lab Med, 2008,132(12):1929-1935.
31
Moelans CB, Oostenrijk D, Moons MJ, et al. Formaldehyde substitute fixatives: effects on nucleic acid preservation[J]. J Clin Pathol, 2011,64(11):960-967.
32
Gillespie JW, Best CJ, Bichsel VE, et al. Evaluation of non-formalin tissue fixation for molecular profiling studies[J]. Am J Pathol, 2002,160(2):449-457.
33
Florell SR, Coffin CM, Holden JA, et al. Preservation of RNA for functional genomic studies: a multidisciplinary tumor bank protocol[J]. Mod Pathol, 2001, 14(2):116-28.
34
Solassol J, Ramos J, Crapez E, et al. KRAS mutation detection in paired frozen and Formalin-Fixed Paraffin-Embedded(FFPE) colorectal cancer tissues[J]. Int J Mol Sci, 2011,12(5):3191-3204.
35
Szafranska AE, Davison TS, Shingara J,et al. Accurate molecular characterization of formalin-fixed, paraffin-embedded tissues by microRNA expression profiling[J]. J Mol Diagn, 2008,10(5):415-423.
36
Malentacchi F, Pizzamiglio S, Wyrich R, et al. Effects of Transport and Storage Conditions on Gene Expression in Blood Samples[J]. Biopreserv Biobank, 2016,14(2):122-128.
37
Caixeiro NJ, Lai K, Lee CS. Quality assessment and preservationof RNA from biobank tissue specimens: a systematic review[J]. J Clin Pathol, 2016,69(3):260-265.
38
Hubel A, Spindler R, Skubitz AP. Storage of human biospecimens: selection of the optimal storage temperature[J]. Biopreserv Biobank, 2014,12(3):165-175.
39
Olivieri EH, Franco Lde A, Pereira RG, et al. Biobanking practice: RNA storage at low concentration affects integrity[J]. Biopreserv Biobank, 2014,12(1):46-52.
40
Wang Y, Zheng H, Chen J, et al. The Impact of Different Preservation Conditions and Freezing-Thawing Cycles on Quality of RNA, DNA, and Proteins in Cancer Tissue[J]. Biopreserv Biobank, 2015,13(5):335-347.
41
Bortolin RC, Gasparotto J, de Vargas AR, at al. Effects of Freeze-Thaw and Storage on Enzymatic Activities, Protein Oxidative Damage, and Immunocontent of the Blood, Liver, and Brain of Rats[J]. Biopreserv Biobank, 2016,[Epub ahead of print].
42
Kisand K, Kerna I, Kumm J, et al. Impactof cryopreservation on serum concentration of matrixmetallo proteinases (MMP)-7, TIMP-1, vascular growth factors (VEGF) and VEGF-R2 in biobank samples[J]. Clin Chem Lab Med, 2011,49:229-235.
43
National Cancer Institute. NCI Best Practices for Biospecimen Resources[S]. USA: Department of Health and Human Services, 2016.
44
Gunther K, Malentacchi F, Verderio P, et al. Implementation of a proficiency testing for the assessment of the preanalytical phase of blood samples used for RNA based analysis[J]. Clin Chim Acta, 2012,413(7-8):779-786.
45
Kim SJ, Dix DJ, Thompson KE, et al. Effects of storage, RNA extraction, genechip type, and donor sex on gene expression profiling of human whole blood[J]. Clin Chem, 2007,53 (6):1038-1045.
46
Doleshal M, Magotra AA, Choudhury B, et al. Evaluation and validation of total RNA extraction methods for microRNA expression analyses in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues[J]. J Mol Diagn, 2008,10(3):203-211.
47
Ach RA, Wang H, Curry B. Measuring microRNAs: comparisons of microarray and quantitative PCR measurements, and of different total RNA prep methods[J]. BMC Biotechnol, 2008,8:69.
48
Cortés MA, Irrazábal E, García-Jerez A, et al. Impact of implementing ISO 9001:2008 standard on the Spanish Renal Research Network biobank sample transfer process[J]. Nefrologia, 2014,34(5): 552-560.
49
ISBER. Best practices for repositories collection, storage, retrieval and distribution of biological materials for research internationa[S]. Biopreserv Biobank, 2012,10(2):79-161.
50
Ho TH, Nateras RN, Yan H，et al. A multidisciplinary biospecimen bank of renal cell carcinomas compatible with discovery platforms at mayo clinic, scottsdale, arizona[J]. PLoS One, 2015, 10(7):e0132831.
[1] 陈舜, 薛恩生, 叶琴. PDCA在持续改进超声危急值管理制度中的价值[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(09): 974-978.
[2] 张梅芳, 谭莹, 朱巧珍, 温昕, 袁鹰, 秦越, 郭洪波, 侯伶秀, 黄文兰, 彭桂艳, 李胜利. 早孕期胎儿头臀长正中矢状切面超声图像的人工智能质控研究[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(09): 945-950.
[3] 方晔, 谢晓红, 罗辉. 品管圈在提高前列腺癌穿刺检出率中的应用[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(07): 722-727.
[4] 张丽丽, 陈莉, 余美琴, 聂小艳, 王婧玲, 刘婷. PDCA循环法在超声浅表器官亚专科建设中的应用[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(07): 717-721.
[5] 吕衡, 董理聪, 谢海琴, 赵卓非, 刘俐, 孙德胜. 基于CT-超声对照的肝脏局灶性病变超声漏诊状况分析：一项单中心横断面质量控制调查报告[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(07): 712-716.
[6] 钟露, 曹省, 宋宏宁, 陈金玲, 周青. 超声心动图定量评估二尖瓣反流程度的质量控制[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(07): 705-711.
[7] 武玺宁, 张培培, 齐振红, 张璟, 赵瑞娜, 孟华, 李建初. 腹膜后神经鞘瘤的超声诊断质量及其影响因素分析[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(07): 701-704.
[8] 刘会, 郑宇觐, 郭丹丹, 张波. 标准切面质量控制在Ⅲ级产科超声检查胎儿结构异常检出中的应用价值[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(03): 337-342.
[9] 卓秋銮, 卫红艳, 姜新魁, 邓世华, 江宁珠, 黄翠平, 范丽萍, 庞慧贤, 张海燕, 姜伟. 双闭环管理人工智能质量控制模式在产前超声切面质量控制中的应用价值[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2023, 20(01): 90-96.
[10] 张一休, 武玺宁, 孝梦甦, 姜英姿, 王亚红, 李建初, 赵峻. 基于虚拟超声模型的腹部超声图像客观化评分的质量控制[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2022, 19(07): 644-648.
[11] 朱兆领, 张小林, 甘宜鑫, 黄蓉, 邵黎阳, 王睿丽, 袁建军. 河南省盆底超声检查开展情况调查分析[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2022, 19(07): 639-643.
[12] 陆爱美, 马苏亚, 谢晓红, 朱玲斐, 王琴, 吴明月. 品管圈在肝声触诊弹性成像标准化改进中的应用效果[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2022, 19(07): 633-638.
[13] 王丽丽, 姜凡, 彭梅. 在超声医学专业质量管理控制指标专家共识指导下的安徽省超声医学质量控制现状[J]. 中华医学超声杂志（电子版）, 2022, 19(07): 629-632.
[14] 姚宏伟, 魏鹏宇, 高加勒, 张忠涛. 不断提高腹腔镜右半结肠癌D3根治术的规范化[J]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2024, 18(01): 1-4.
[15] 刘佳, 李梦伊, 刘洋, 田沛荣, 边识博, 张鹏, 张忠涛. 减重与代谢外科临床数据规范化管理与实践[J]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2023, 17(01): 15-19.
阅读次数
全文


摘要

版权所有 中华医学会 中华医学电子音像出版社有限责任公司  京ICP备14006079号-1  网络出版服务许可证：(署)网出证(京)字第075号